變性后的DNA很快冷卻至40～60℃，即可使引物和模板DNA發(fā)生結合。這是由于模板DNA結構比引物復雜得多，引物和模板之間碰撞的機會大大高于模板互補鏈之間的碰撞。復性溫度的選擇，可以根據(jù)引物的長度和其G-+-C含量確定。引物長度為15～25bp時，退火溫度可通過Tm＝4X（G+C）+2X（Ad-T）計算得到。在Tm允許的溫度范圍內(nèi)，選擇較高的退火溫度可大大減少引物和模板之間的非特異結合，提高

PCR的特異性。退火時間設置為30s，足以使引物和模板之間*結合。

 

    PCR反應的延伸溫度為70—75℃，此時，TaqDNA聚合酶具有zui高活性。引物在16個核苷酸以下時，過高的延伸溫度不利于引物和模板的結合?？刹捎梅磻獪囟染徛叩?0～75℃的方法。因為在zui初較低溫度下，DNA聚合酶已催化延伸反應開始，隨后的較高溫度不會對“延長”過的引物和DNA模板的結合發(fā)生影響。PCR延伸反應的時間，可根據(jù)待擴增片段的長度而定。一般lkb以內(nèi)的片段，延伸時間lmin足夠。擴增片段在lkb以上則需增加延伸時間。

 

    以上參數(shù)確定后，PCR循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA的濃度。理論上20～25次循環(huán)后，PCR產(chǎn)物的積累即可達到zui大值。實際操作中由于每步反應的產(chǎn)率不可能達到*，因此不管模板濃度多少，20～30次是比較合理的循環(huán)次數(shù)。循環(huán)反應的次數(shù)越多，非特異性產(chǎn)物的量也會增加。