豬瘟（Classical Swine Fever, CSF）血液檢測試劑是用于檢測豬瘟病毒（CSFV）的重要工具。【SJ-ZWSJ1】【豬瘟檢測試劑生產廠家，生化監測設備供應商，選山東水境，品質有保障！】
【操作步驟】
一、樣品制備
1、 血液樣品：采集抗凝血（抗凝劑為EDTA）或血清樣品，編號備用。
2、 組織樣品：采集脾臟、肝臟、淋巴結、扁桃體等病變組織樣品或軟蜱0.1g（黃豆粒大小），眼科剪剪碎于組織勻漿器或研缽中充分勻漿或研磨，再加1mL生理鹽水混勻，4°C條件下8000 rpm/分鐘離心2分鐘，取上清液于滅菌離心管中，編號備用。
二、DNA提取
取反應液A 20μL分別加入到新的1.5mL離心管，加入抗凝而或血清或組織上清液2μL混勻，室溫（20°C左右）靜置3分鐘，加入反應液B 20μL,吹打混勻即可，若為抗凝全血，則需8000rpm/分鐘再離心2分鐘后做為待檢DNA溶液。
二、PCR擴增
1、配液：取出PCR反應液、酶混合液，在室溫融化后，充分混勻，瞬離，可將酶混合液全部取岀直接加入到PCR反應液中，充分混勻，瞬離后按每份20μL分裝使用；或按照每份PCR反應液17μL, 酶混合液3μL的比例取一定的試驗用量，混合兩種反應液,瞬離后按照每份20μL分裝到專用熒光PCR 反應管中，剩余試劑立即凍存；（操作過程要注意避光）
2、加樣擴增：分別向上述PCR反應管中加入5μL樣本 DNA或陰性對照或陽性對照，混勻并瞬離, 放入熒光PCR儀上運行以下程序：
步驟 條件 循環數 UNG處理 50°C： 2分鐘 1 預變性 95°C： 3分鐘 1 預擴増 95°C： 8 秒 55C： 8 秒 5 PCR擴增 95°C： 8 秒 55°C： 8 秒 40
熒光通道選擇FAM,在40循環階段每個循壞的55°C時收集熒光信號。設置擴增體系為25μL,同時要選擇 passive reference 和 quencher 為 none 的模式。
(注:若熒光PCR儀(如ABI7500)按說明書中的反應程序設置后因持溫時間短無法運行,可將預擴增和PCR擴增條件變更為95°C： 5秒 55°C：30秒。)
二、【結果判定】
1、 基線和閾值設定；基線調整取6-15個循環的熒光信號，閾值設定以閾值線剛好超過陰性對照檢測 熒光曲線的最高點為原則。
2、 質量控制：反應結束后，陰性對照的檢測結果應無特定的擴增曲線，Ct值為＞38或無；陽性對照 的Ct值應≤30.0,且明顯的擴增曲線；否則實驗視為無效。
3、 樣品判定：待檢樣品熒光信號有指數型增加，且結果顯示Ct值<35.0,報告為陽性；未檢測到Ct 值或Ct值＞38或無明顯擴增曲線，則樣品判定為陰性。35≤Ct值≤8時，復檢一次，重復結果為陽性者判定為陽性，否則判定為陰性。
三、【注意事項】
1、實驗前請仔細閱讀本試劑盒說明書，嚴格按照操作步驟執行，在操作過程中對時間、試劑體積等精 確控制可以獲得結果。
2、 實驗室應嚴格按照有關規定分區管理。各區間人員、器材、試劑及空氣流向應有產格要求。
3、 有關耗材確保潔凈、無菌，核酸提取完成后盡快進入下一步試驗或冷凍保存。
4、預混后的試劑應盡量在短期內使用完畢，戶外使用應在加冰袋的泡沫盒保存，每日試驗完畢應及時 冷凍保存。
5、 對于熒光PCR管要避免徒手或使用過的手套接觸，檢測過程中使用不帶熒光物質一次性乳膠手套。
6、 凍存試劑使用前應于室溫下融化，充分混勻，瞬時離心使液體沉于管底。
7、 樣品、陰性對照封蓋后，在通風環境添加陽性對照并及時封蓋，避免組分間及氣溶膠等假陽性污染。
8、 擴增反應完畢后的PCR管嚴禁開蓋,應和試驗產生的其它廢棄物一起及時收集,遠離PCR實驗室 進行無害化處理。
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