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倉鼠源細胞實驗要點及說明的幾項

2020-12-2  閱讀(420)

倉鼠源細胞實驗要點及說明:

1.本方法適用于倉鼠源細胞培養,而不適用于懸浮細胞培養,懸浮細胞可使用滴片法; 

2.所使用的蓋玻片應該為優質玻璃,并經過鉻酸洗液處理; 

3.蓋玻片非常薄,易碎,取放蓋玻片時動作要輕; 

4.如果需要更多生長狀態*的細胞,可以使用較大的培養皿,但不宜過大,以避免培養液的浪費和增加污染機率; 

5.如果細胞貼壁生長能力較差,可將蓋玻片在0.5%多聚賴氨酸溶液中浸泡5-10分鐘并自然晾干。

倉鼠源細胞注意事項:

實驗進行前,無菌室及無菌操作臺(laminarflow)以紫外燈照射30-60分鐘滅菌,以70%ethanol擦拭無菌操作抬面,并開啟無菌操作臺風扇運轉10分鐘后,才開始實驗操作;每次操作只處理倉鼠源細胞,且即使培養基相同亦不共享培養基,以避免失誤混淆或細胞間污染。實驗完畢后,將實驗物品帶出工作臺,以70%ethanol擦拭無菌操作抬面;
操作間隔應讓無菌操作臺運轉10分鐘以上后,再進行下一個細胞株之操作;無菌操作工作區域應保持清潔及寬敞,必要物品,例如試管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暫時放置,其它實驗用品用完即應移出,以利于氣流之流通。實驗用品以70%ethanol擦拭后才帶入無菌操作臺內。實驗操作應在抬面之無菌區域,勿在邊緣之非無菌區域操作;
小心取用無菌之實驗物品,避免造成污染。勿碰觸吸管尖頭部或是容器瓶口,亦不要在打開之容器正上方操作實驗。容器打開后,以手夾住瓶蓋并握住瓶身,傾斜約45°角取用,盡量勿將瓶蓋蓋口朝上放置桌面。
工作人員應注意自身之安全,須穿戴實驗衣及手套后才進行實驗。對于來自人類或是病毒感染之細胞株應特別小心操作,并選擇適當等級之無菌操作臺(至少ClassⅡ)。操作過程中,應避免引起aerosol之產生,小心毒性藥品,例如DMSO及TPA等,并避免尖銳針頭之傷害等。

倉鼠源細胞培養操作步驟 :

1.用蓋片鑷將蓋玻片自75%乙醇中取出,用無菌絲綢布擦拭干凈,不要用紗布; 

2.將蓋玻片輕輕放入6孔培養板(每孔一片)或培養皿中(每個平皿可放置2-3片); 

3.在距離紫外燈直射范圍內20-30 厘米處照射2-3小時; 

4.將經過計數的細胞懸浮液移入培養板中,使蓋玻片*浸在培養液中; 

5.將培養板在5% CO2水浴孵箱中37℃孵育2-3天,當倉鼠源細胞生長至覆蓋培養板底部2/3面積時將培養板取出,用蓋片鑷輕輕取出蓋玻片,用蒸餾水漂洗后即可進行快速固定以及免疫細胞化學檢測。 



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