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免疫組化染色實驗操作規范
1、脫蠟：二甲苯?酒精?蒸餾水
2、內源性過氧化物酶的消除：采用過氧化物酶的檢測系統，必須進行內源性過氧化物酶封閉處理。如果不進行處理，組織中的紅細胞、粒細胞會干擾染色結果的判斷。常用0.3%H2O2作用切片10分鐘，對染色結果及抗原保存都沒有影響，封閉效果比較顯著。
3、血清封閉：在加入一抗前需用二抗的正常血清進行封閉，可以減少非特異性結合。目前使用的二步法檢測系統可以免去這一步驟。
4、抗體使用：已有大量的即用型抗體供實驗室使用，廠家已進行過多次的實驗檢測，可按廠家提供的條件進行操作。濃縮型抗體一般按照廠家提供的建議稀釋度，進行對倍稀釋預實驗。選定*的稀釋滴度后再進行批量實驗。染色背景深大多是抗體濃度過高所致。抗體孵育溫度一般以常溫25℃為基準或37℃30分鐘，也可4℃冰箱過夜。細胞
5、沖洗：常用的沖洗液為PBS或TBS緩沖液，要嚴格執行沖洗步驟，防止因沖洗不凈引起的背景著色，緩沖液中加入Tween20可以增強沖洗效果。
6、檢測系統：通用的檢測系統有*標記的ABC、SP、LSAB等，此類檢測系統較為經濟，日前仍有不少醫院在使用。非*類檢測系統價錢較貴，由于不需通過*的結合，可以避免內源性*的干擾，其特點：敏感、省時、方便、背景低。
7、顯色系統：由于檢測系統采用的是辣根過氧化物酶，因此選擇DAB（棕色）和AEC（紅色）作為酶的底物，若采用堿性磷酸酶系統則選擇BCIP/NBT（藍紫色），常規免疫組化顯色的仍然是DAB，定位清晰，易于保存。AEC不能耐受酒精及敏感性低，BCIP/NBT陽性雖鮮艷，但陽性定位不準確。
8、復染：襯染步驟十分簡單，但襯染的好壞對染色zui終結果的質量影響很大。有的選用Harris蘇木素，有的用Mayer’s蘇木素，且與DAB染色對照效果，在絕大多數實驗室中使用簡單方便。也有實驗室使用甲基綠襯染襯染，但不能經有機溶劑，容易退色。細胞
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