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藥物誘導細胞凋亡時Bcl-2蛋白含量的變化

閱讀:766發布時間:2011-9-16

原理】

Western印跡法,把聚丙烯酰胺凝膠電泳分離的組分從凝膠轉移至一種固定支持體,以針對特定氨基酸序列的特異性試劑作為探針檢測之。對于蛋白質來說,通常使用的探針是抗體,它與附著于支持體的靶蛋白所呈現的抗原表位發生特異性反應。

【試劑與器材】

1.細胞裂解液:50mmol/LTris-HCl,150mmol/LNacl,5mmol/LEDTA,1%NP40,0.05%PMSF,2μg/mLAprotinin,0.5μg/mLLeupeptin,pH8.0

2.2×上樣buffer:100mmol/LTris-HCl,pH6.8,200mmol/LDTT,4%SDS,0.2%溴酚藍,20%甘油

3.分離膠:水,30%丙烯酰胺溶液,1.5mol/LTris(pH8.8),10%SDS,10%過硫酸銨,TEMED

4.濃縮膠:水,30%丙烯酰胺溶液,1.0mol/LTris(pH8.8),10%SDS,10%過硫酸銨,TEMED

5.1×電泳buffer:25mmol/LTris-Hcl,pH8.0,250mmol/L*,0.1%SDS,pH8.3

6.電轉移buffer:39mmol/L*,48mmol/LTris-Hcl,0.037%SDS,20%甲醇

7.封閉液:5%脫脂奶粉,0.02%疊氮鈉,0.02%Tween-20溶于PBS

8.漂洗液Ⅰ(0.01mol/LPBS,pH7.2)

9.漂洗液Ⅱ(150mmol/LNaCl,50mmol/LTris-Cl,pH7.5)

10.二抗稀釋液(5%脫脂奶粉,0.02%Tween-20,150mmol/LNaCl,50mmol/LTris-Cl,pH7.5)

11.ECL顯色液:試劑盒

12.微型垂直板電泳槽

【操作步驟】

(1)樣品制備

將細胞以4.0×108/L密度接種于用12孔培養板中,每孔3mL,37℃、5%CO2孵箱中培養至細胞貼壁,加入長春新堿,使之終濃度分別為0、10、100μg/mL。繼續培養過夜。棄去培養基,以冷PBS(pH7.2)洗滌細胞,每孔加入100μL細胞裂解液,用細胞刮刮下細胞,-20℃放置20min,將裂解液收集于1.5mL的EP管中,冰上超聲破碎細胞(10s/次×3次,間隔15s),4℃,12000×g離心5min,收集上清液,蛋白質樣品與等體積2×上樣buffer混勻,煮沸5min,紫外分光光度法測定蛋白質濃度(A215/A225)。立即上樣或將樣品保存于-20℃備用。

(2)SDS-PAGE

采用微型垂直板電泳槽制備0.75mm厚的凝膠。首先制備10mL12.5%分離膠,混勻后立即灌膠,小心加蒸餾水覆蓋,室溫聚合30min,膠聚合后,傾去蒸餾水。制備5mL5%成層膠,插入樣品梳,避免產生氣泡,室溫聚合40min,小心取出樣品梳,用蒸餾水小心沖洗加樣孔數遍后,將凝膠板裝到電泳槽上,加入1×電泳buffer。上樣50μg/孔。恒壓200V電泳約45min,當溴酚藍到達分離膠底部時,關閉電源,小心剝離凝膠。

(3)用考馬斯亮藍R-250對凝膠染色及脫色

(4)轉膜

按照凝膠>NC膜>濾紙的順序,剪好一張NC膜(標記一角)和6張新華濾紙,將NC膜在蒸餾水中浸泡5min以消除氣泡,同時用電轉移buffer浸泡濾紙、凝膠、吸水海棉層。按說明書裝好電轉移槽,將黑色多孔塑料夾放在zui底層,再依次放置吸水海棉層、3層濾紙、凝膠、NC膜、3層濾紙、海棉層、無色多孔塑料夾,注意趕氣泡,合攏好夾子放入電轉移槽中(黑的靠黑的,白的靠紅的),正確連接電極,即膠朝陰極,NC膜靠陽極,使凝膠上的蛋白質向NC膜印跡轉移。100V恒壓,加冰條件下電轉移3h。起始電流應小于250mA,結束電流不應超過400mA。

(5)免疫印跡

從電泳槽上取出NC膜,用PBS洗2次,以除去NC膜上的凝膠。裝NC膜于一可加熱封接的塑料袋中,加入封閉液(5%脫脂奶粉,0.02%疊氮鈉,0.02%Tween-20溶于PBS),放在平緩搖動的搖床封閉3h。封閉結束,將膜轉移至新的可加熱封接的塑料袋中,按0.1mL/cm2的量加入封閉液和適量的*抗體(兔抗大鼠Bcl-2單克隆抗體1∶200),封口,4℃振搖過夜。剪開塑料袋,用約200mL漂洗液Ⅰ洗3次,各10min,以除去過量的一抗。用漂洗液Ⅱ洗3次,每次10min,除去NC膜上的磷酸鹽及疊氮鈉。將膜轉入另一塑料袋,加入溶于二抗稀釋液的二抗(1∶5000),封口,室溫平緩搖動1h。取出NC膜,用大量漂洗液Ⅱ洗5次,各10min,以除去未結合的二抗。將ECL顯色液A與B臨用前等量混合,浸泡膜1min,暗室X-ray膠片曝光,顯影、定影,翻拍成照片,*保存或成像系統成像保存。


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